La conservation de la lamproie marine ( Petromyzon marinus), de la lamproie de rivière ou lamproie fluviatile ( Lampetra fluviatilis) et de la lamproie de Planer ( L.planeri) représentent un enjeu majeur. En effet, la lamproie marine est classée en tant qu’espèce en danger, et la lamproie de rivière est considérée comme vulnérable, selon les critères de l'Union internationale pour la conservation de la nature (UICN), sur la liste rouge des poissons de France. En outre, la répartition de ces trois espèces reste mal connue en France, et ce projet visait initialement à développer une approche de détection des trois espèces à partir d’ADN environnemental (ADNe).

À l’âge adulte, la lamproie marine peut-être distinguée facilement des deux autres espèces de lamproie (photo 1). Néanmoins, au stade juvénile, les larves dites « ammocètes » des trois espèces sont impossibles à distinguer dans leur première année. À partir d’une taille d’environ 5 cm, les ammocètes de P. marinus présentent une coloration sombre sur la nageoire caudale qui permet de les distinguer des larves des deux autres espèces. De plus, des marqueurs de l’ADN mitochondrial permettent aussi de distinguer P. marinus des deux espèces de Lampetra ( Docker et al., 1999). En revanche, la lamproie fluviatile et la lamproie de Planer sont très proches génétiquement et leur ADN mitochondrial est similaire. De plus, il n’est pas possible de les distinguer morphologiquement à tous les stades juvéniles. À l’âge adulte, c’est principalement la taille qui permet de distinguer L. planeri (10 à 15 cm) de L. fluviatilis (18 à 30 cm). Ces deux espèces s’hybrident et sont considérées comme des écotypes 1 avec un isolement reproducteur partiel ( Rougemont et al., 2015). Les objectifs de ce projet étaient donc de développer 1) des marqueurs moléculaires permettant de distinguer ces deux espèces, et 2) une approche de détection de la présence des trois espèces de lamproie par ADN environnemental. Seul le premier objectif a été atteint et ce sont donc uniquement les résultats liés à cet objectif qui sont présentés.

De haut en bas : lamproie marine, lamproie de rivière (x2) et lamproie de Planer (source : U3E, INRAE).

Nous avons ensuite développé un protocole de PCR 2 quantitative, c’est-à-dire d’amplification ciblée et quantifiée d’une zone du génome, pour analyser en routine ce SNP diagnostique de L. fluviatilis et L. planeri. Ce marqueur nommé diagLpf a été testé sur 270 échantillons comprenant des larves et des adultes des deux espèces issues de dix-sept sites de France, mais aussi d’Irlande et du Royaume-Uni (figure 1). Ces échantillons archivés au laboratoire provenaient pour la plupart d’études précédentes, et ont été collectés grâce au soutien de nombreuses fédérations de pêche et associations migrateurs 3. Nous avons aussi sollicité des collègues chercheurs du Royaume-Uni et d’Irlande pour avoir des échantillons à une large échelle spatiale afin de tester la validité de diagLpf au-delà des cours d’eau français. En particulier, nous avons pu avoir des échantillons de la population de lamproies du Loch Lomond en Écosse, qui possède la particularité d’abriter trois « formes » de lamproies qui s’hybrident : la lamproie fluviatile (parasite-anadrome), la lamproie de Planer (non parasite-résident en eau douce), et une forme lacustre de la lamproie fluviatile qui parasite des poissons en eau douce.

Les résultats ont été cohérents avec l'identification morphologique dans tous les cas, sauf pour les échantillons provenant du bassin du Rhône et du Loch Lomond en Écosse ( Souissi et al., 2022). Dans le cas du Rhône, nous pensons que la présence d’une lignée très divergente de la lamproie de Planer (voire d’une espèce cryptique 4) soit la cause de ce polymorphisme particulier. L’évolution de lignées divergentes entre des bassins versants atlantiques et méditerranéens a déjà été documentée (cas de la truite commune) en lien avec l’histoire glaciaire de ces bassins ( Bernatchez et al., 1992). Dans le cas du Loch Lomond, les deux formes parasites étaient bien homozygotes (ff) au marqueur diagLpf, mais les individus de la forme résidente étaient soit homozygotes (ff) ou hétérozygotes 5 (pf). Ainsi, le marqueur diagLpf n’est pas diagnostique dans ce cas de figure avec plus de deux formes de Lampetra en sympatrie, l’hybridation étant en outre très fréquente entre ces formes.

Les points blancs indiquent les populations où le marqueur diagLpf fonctionne, et les points noirs les cas où ce marqueur ne permet pas de distinguer L. fluviatilis et L. planeri ( Souissi et al., 2022).

En conclusion, à l’échelle nationale, le marqueur diagLpf permet de distinguer les larves ammocètes de L. planeri et L. fluviatilis (hors bassin du Rhône). Ainsi, lors de la capture d’ammocètes dans le cadre d’inventaires et de pêches électriques, l’identification de l’espèce est désormais possible à partir d’un morceau de nageoire. Cet outil permettrait donc de connaître la répartition des ammocètes des trois espèces de lamproies dans les bassins versants, et de déterminer une éventuelle différence d’habitats entres espèces en lien avec les caractéristiques physiques (profondeur, température, degré d’oxygénation, granulométrie…) et biotiques (présence d’autres espèces de lamproies ou d’invertébrés) du substrat. Nous avons également testé l’amplification de diagLpf avec des échantillons d’ADNe extraits à partir de prélèvements d’eau. Néanmoins, malgré de nombreuses tentatives et tests de divers protocoles, cette démarche n’a pas abouti. À l’avenir, les nombreux développements techniques en cours dans le domaine de l’ADNe, nous permettent toutefois d’espérer pouvoir détecter la présence des lamproies par cette approche.

^{Photo d’entête : © Rostislav (Adobe Stock} )